Publié le 16.10.2002
Tableau 1: Espèces de chlamydies au potentiel zoonotique avéréa | |||||
Espèce | Hôtes principaux et (hôtes secondaires) | Manifestation clinique chez les hôtes principaux | Transmission à l‘homme | Manifestation clinique chez l‘homme | Matériel analysé chez l’hommeb |
Chlamydia psittacic | Oiseaux (Cheval) | Conjonctivite, pneumonie (atypique), entérite, hépatite Avortement, pneumonie | Inhalation | De symptômes pseudo-grippaux à des maladies systémiques graves, pneumonie atypique | LBA |
Chlamydia abortusc | Brebis, chèvre, (bœuf, porc, cheval) | Avortement, animaux mort-nés, animaux faibles à la naissance | Inhalation, ingestion | Avortement, pneumonie atypique | LBA,matières abortives |
Chlamydia caviae | Cochon d‘Inde, (cheval) | Conjonctivite, kératite, pneumonie | Contact direct | Conjonctivite, pneumonie atypique | LBA |
Chlamydia felis | Chat | Conjonctivite, rhinite | Contact direct | (Kérato-)conjonctivite | Écouvillon conjonctival |
a Liste par ordre décroissant d’importance zoonotique; adapté d’après [1]. b LBA: lavage bronchoalvéolaire c Épizooties à déclaration obligatoire en Suisse selon l’Ordonnance sur les épizooties (https://www.fedlex.admin.ch/eli/cc/1995/3716_3716_3716/fr). Les laboratoires vétérinaires reconnus doivent déclarer les résultats positifs aux offices vétérinaires cantonaux, qui informent à leur tour l’Office fédéral de la sécurité alimentaire et des affaires vétérinaires (OSAV). |
Tableau 2: Sélection de méthodes de PCR en temps réel pour la mise en évidence d’espèces de chlamydies zoonotiques | ||||||
Référence | Cible | Espèces de chlamydies détectées | Spécifications de test | |||
C. psittaci | C. abortus | C. caviae | C. felis | |||
[16] | ompA1 | x | x | x | x | 4 PCR singleplex spécifiques C. psittaci: pas de détection du génotype M56 |
[17] | CPSIT_RS035052 | x | Détection de tous les génotypes | |||
[18] | PCR 1 = 16S-23S Opérons d’ARNr PCR 2= CPSIT_06072 | x | x | PCR duplex: la PCR 1 détecte C. psittaci et C. abortus sans les différencier; la PCR 2 détecte C. psittaci. Pas de détection des génotypes M56 et en partie E/B de C. psittaci. L’interprétation «C. abortus positif» en cas de résultat négatif à la PCR 2 est basée sur la spécificité de l‘hôte et le tropisme tissulaire. | ||
[5] | rpoB3 | x | x | x | Identification par amplification d’un fragment rpoB puis différenciation des espèces par analyse de la courbe de fusion | |
1 outer membrane protein A 2 Gène spécifique de C. psittaci de fonction inconnue 3 Sous-unité ẞ de l’ARN polymérase |
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